Modelowanie PK/PD

Modele zwierzęce in vivo:

• Projektowanie modeli chorobowych na potrzeby badań przedklinicznych, zgodnie z wymaganiami partnera biznesowego.
• Przedkliniczne badania toksyczności oraz behawioralne na modelach zwierzęcych (Mysz domowa, Szczur wędrowny, Danio pręgowany) w celu oceny aktywności biologicznej oraz skuteczności substancji i formulacji.

Badania farmakokinetyczne (PK):

• Opracowywanie protokołów badań klinicznych leków z uwzględnieniem ich profilu farmakokinetycznego (PK) i farmakodynamicznego (PD).
• Laboratoryjne badania analityczne profilu PK/PD substancji czynnych (API).
• Populacyjne modelowanie farmakokinetycznofarmakodynamiczne z zastosowaniem nieliniowych modeli efektów mieszanych, przy użyciu języka R, środowiska RStudio oraz platformy NONMEM.
• Modelowanie progresji i regresji chorób.
• Farmakometria z wykorzystaniem narzędzi: R, RStudio, NONMEM.
• Farmakologia systemowa – badania nad markerami fenotypowymi chorób oraz personalizacją farmakoterapii.

IBadania in vitro / testy toksyczności komórkowej:

• In vitro ocena właściwości przeciwnowotworowych oraz toksyczności nowo zsyntetyzowanych substancji czynnych (API).
• Skriningowe testy in vitro oceniające możliwość penetracji bariery krew–mózg przez nowe związki chemiczne, z wykorzystaniem dwukierunkowego testu MDCK-MDR1 (MDCK-MDR1 bi-directional assay).

Proteomika / Metabolomika / Biologia molekularna:

• Zaawansowane analizy białek i metabolitów oraz identyfikacja markerów i szlaków biologicznych – wykorzystywane w walidacji mechanizmów działania i projektowaniu terapii celowanych. Ocena interakcji farmakodynamicznych in vitro (wyznaczanie stałych wiązania KD i Ka) między ligandami (białka, kwasy nukleinowe) a analitami (substancje niskocząsteczkowe, metabolity, białka, kwasy nukleinowe) w czasie rzeczywistym, z wykorzystaniem technologii:
  - interferencji fal dwufazowych (BLI; system Octet K2)
  - mikroskalowej termoforezy (MST + TS; system Monolith X).
• Ocena interakcji farmakodynamicznych oraz odpowiedzi molekularnej docelowych struktur biologicznych (targets) w próbkach in vitro, in vivo oraz klinicznych, z wykorzystaniem metod pośrednich:
  - ilościowa analiza ekspresji genów (qPCR; system Opus 96)
  - oznaczenia metodą ELISA z detekcją fluorescencji lub bioluminescencji (czytnik Glomax)